Responsables : Harmen Reyngoudt & Benjamin Marty

L’imagerie et la spectroscopie par résonance magnétique nucléaire (RMN) sont des techniques puissantes permettant d’étudier in vivo l’anatomie, la physiologie et la biochimie du muscle au cours d’une unique séance d’examens.

En outre, le contraste intrinsèque du muscle par RMN est extrêmement riche et des séquences d’impulsions radiofréquences adaptées permettent de quantifier spécifiquement différentes variables comme la fraction de graisse intramusculaire, les temps de relaxation de l’eau musculaire, la perfusion ou l’oxygénation du muscle, qui sont potentiellement altérées chez des sujets atteints de pathologies neuromusculaires.

Le laboratoire concentre la plupart de ses efforts sur le développement de ces méthodes RMN quantitatives, leur validation, leur promotion, et leur utilisation dans le cadre d’essais cliniques mono-centriques et multi-centriques concernant les pathologies neuromusculaires. Ceux-ci visent à étudier l’histoire naturelle de ces maladies ou à évaluer l’effet de thérapies innovantes.

Plus précisément, nos projets de recherche s’intéressent :

• Au développement préclinique et clinique de nouveaux contrastes RMN permettant de détecter et de quantifier différents processus pathologiques impliqués dans l’apparition et la progression des myopathies, comme l’inflammation, la nécrose, et la fibrose musculaire.
• A déterminer la valeur prédictive des nouveaux contrastes RMN sur la progression de certaines pathologies.
• Au développement d’outils permettant d’étudier le muscle à l’exercice (ergomètres non-magnétiques, antennes radiofréquences, séquences RMN entrelacées, …).
• A l’accélération des acquisitions RMN grâce à l’implémentation de nouveaux schémas d’encodage du signal (acquisitions radiales sous échantillonnées) et la quantification simultanée de plusieurs variables (« fingerprinting » par RMN, méthodes d’apprentissage profond, …).

Composition de l’équipe

Benjamin Marty, PhD, Co-responsable, AIM
Harmen Reyngoudt, PhD, Co-responsable, AIM
Jean-Marc Boisserie, AIM
Ericky Caldas de Almeida Araújo, PhD, AIM
Julien Dousseau, AIM
Yves Fromes, MD, PhD, AIM
Eric Giacomini, CEA, AIM
Julien Le Louër, AIM
Alfredo Lopez Kolkovsky, PhD, AIM
Béatrice Matot, PhD, AIM
Pierre-Yves Baudin, PhD, AIM

Contact

01 42 16 58 98
rdv_rmn@institut-myologie.org

Nos principales publications

• B. Marty and P.G. Carlier: MR fingerprinting for water T1 and fat fraction quantification in fat infiltrated skeletal muscles. Magnetic Resonance in Medicine, 2020 Feb;83(2):621-634. doi: 10.1002/mrm.27960.
• T. Gidaro, H. Reyngoudt, J. Le Louër, A. Behin, F. Toumi, M. Villeret, E.C.A. Araujo, PY. Baudin, B. Marty, M. Annoussamy, J.Y. Hogrel, P.G. Carlier, L. Servais. Quantitative nuclear magnetic resonance imaging detects subclinical changes over 1 year in skeletal muscle of GNE myopathy. J Neurol. 2019 Oct 15. doi: 10.1007/s00415-019-09569-6.
• H. Reyngoudt, A.L. Lopez Kolkovsky, P.G. Carlier. Free intramuscular Mg2+ concentration calculated using both 31 P and 1 H NMRS-based pH in the skeletal muscle of Duchenne muscular dystrophy patients. NMR Biomed. 2019; Jun 11:e4115. doi: 10.1002/nbm.4115.
• B. Marty, P.G. Carlier. Physiological and pathological skeletal muscle T1 changes quantified using a fast inversion-recovery radial NMR imaging sequence. Sci Rep. 2019 May 2; 9(1):6852. doi: 10.1038/s41598-019-43398-x.
• T. Gerhalter, L.V. Gast, B. Marty, J. Martin, R. Trollmann, S. Schüssler, F. Roemer, F.B. Laun , M. Uder, R. Schröder, P.G. Carlier, A.M. Nagel: 23Na MRI Depicts Early Changes in Ion Homeostasis in Skeletal Muscle Tissue of Patients With Duchenne Muscular Dystrophy. Journal of Magnetic Resonance Imaging, 2019, doi: 10.1002/jmri.26681.
• G.J. Strijkers, E.C.A. Araujo, N. Azzabou, D. Bendahan, A. Blamire, J. Burakiewicz, P.G. Carlier, B. Damon, X. Deligianni, M. Froeling, A. Heerschap, K.G. Hollingsworth, M.T Hooijmans, D.C. Karampinos, G. Loudos, G. Madelin, B. Marty, A.M. Nagel, A.J. Nederveen, J.L. Nelissen, F. Santini, O. Scheidegger, F. Schick, C. Sinclair, R. Sinkus , P.L. de Sousa, V. Straub, G. Walter, H.E. Kan: Exploration of New Contrasts, Targets, and MR Imaging and Spectroscopy Techniques for Neuromuscular Disease – A Workshop Report of Working Group 3 of the Biomedicine and Molecular Biosciences COST Action BM1304 MYO-MRI. Journal of Neuromuscular Diseases, 2019;6(1):1-30.
• B. Marty, R. Gilles, M. Toussaint, A. Béhin, T. Stojkovic, B. Eymard, P.G. Carlier and K. Wahbi: Comprehensive Evaluation of Structural and Functional Myocardial Impairments in Becker Muscular Dystrophy using Quantitative Cardiac Magnetic Resonance Imaging. European Heart Journal: Cardiovascular Imaging, 2019, 20(8):906-915.
• B. Marty, B. Coppa and P.G. Carlier: Fast, precise, and accurate myocardial T1 mapping using a radial MOLLI sequence with FLASH readout. Magnetic Resonance in Medicine, Epub ahead of print.
  H. Reyngoudt, S. Turk and P.G. Carlier: 1H NMRS of carnosine combined with 31P NMRS to better characterize skeletal muscle pH dysregulation in Duchenne muscular dystrophy. NMR in Biomedicine, 2018, 31(1).
• J.L. Thibaud, B. Matot, I. Barthelemy, Y. Fromes, S. Blot and P.G. Carlier: Anatomical and mesoscopic characterization of the dystrophic diaphragm: An in vivo nuclear magnetic resonance imaging study in the Golden retriever muscular dystrophy dog. Neuromuscular Disorders, 2017, 27(4): 315-325.
• C. Le Guiner, L. Servais, M. Montus, T. Larcher, B. Fraysse, S. Moullec, M. Allais, V. Francois, M. Dutilleul, A. Malerba, T. Koo, J.L. Thibaut, B. Matot, M. Devaux, J. Le Duff, J.Y. Deschamps, I. Barthelemy, S. Blot, I. Testault, K. Wahbi, S. Ederhy, S. Martin, P. Veron, C. Georger, T. Athanasopoulos, C. Masurier, F. Mingozzi, P. Carlier, B. Gjata, J.Y. Hogrel, O. Adjali, F. Mavilio, T. Voit, P. Moullier and G. Dickson: Long-term microdystrophin gene therapy is effective in a canine model of Duchenne muscular dystrophy. Nature communications, 2017, 8: 16105.
• E.C.A. Araujo, N. Azzabou, A. Vignaud, G. Guillot and P.G. Carlier: Quantitative ultrashort TE imaging of the short-T2 components in skeletal muscle using an extended echo-subtraction method. Magnetic Resonance in Medicine, 2017, 78(3): 997-1008.